来源 | 解决方案 |
脱蜡不充分 | 延长切片脱蜡时间或更换新鲜二甲苯 |
无活性的一抗 | 更换新一批抗体 |
由于储存不当,抗体无法发挥作用 | 将抗体分装成较小的体积并储存在冰箱中(-20 至 -70°C),并避免重复冻融循环。或根据制造商的说明储存抗体。 |
抗体浓度太低 | 增加一抗和/或二抗的浓度。或者运行连续稀释测试以确定提供最佳信噪比的最佳稀释度 |
抗体 孵育时间不足 | 增加抗体 孵育时间 |
组织固定不充分或不正确 | 增加后固定时间或尝试不同的固定剂 |
组织过度固定 | 减少后固定的持续时间。如果组织已经过度固定,请执行适当或推荐的抗原修复程序。 |
二抗和一抗不相容 | 使用可与一抗相互作用的二抗。例如,如果一抗是从兔子中产生的,则使用抗兔二抗 |
无活性二抗 | 更换新一批抗体 |
无活性 ABC 试剂 | 更换新一批试剂 |
酶底物 系统有缺陷或不相容 | 更换新一批试剂 |
底物孵育时间不足 | 增加底物孵育时间 |
封固剂不正确 | 选择正确的封固剂 |
试剂使用顺序错误或步骤省略 | 检查注释或使用的程序 |
来源 | 解决方案 |
一抗和/或二抗浓度过高 | 降低抗体浓度或进行滴定以确定一抗和二抗的最佳稀释度 |
孵化时间太长 | 减少孵化时间 |
孵化温度太高 | 降低孵化温度 |
底物 孵育时间太长 | 减少底物孵育时间 |
切片变干 | 避免切片变干 |
来源 | 解决方案 |
切片清洗不充分 | 步骤之间至少清洗 3 次 |
组织含有内源性酶,例如过氧化物酶或碱性磷酸酶 | 在孵育一抗之前,使用甲醇或左旋咪唑溶液(阻断 AP)中的 3% 过氧化氢(阻断过氧化物酶)阻断内源酶活性。 |
组织含有内源性生物素活性 | 在孵育一抗之前,使用亲和素/生物素封闭试剂封闭内源生物素活性。 |
一抗与组织非特异性结合或抗体浓度过高 | 使用较高稀释度的一抗可以减少非特异性结合 |
二抗与组织的非特异性结合 | 用来自同一物种的正常血清作为二抗处理组织。 |
二抗与类似物种的组织发生交叉反应,即兔抗大鼠 IgG 可能与小鼠组织发生交叉反应。 | 使用预吸附的第二抗体,即在小鼠组织上使用兔抗大鼠IgG,小鼠吸附,或在大鼠组织上使用兔抗小鼠IgG,大鼠吸附。 |
由于固定不充分导致组织抗原扩散 | 增加后固定时间 |
用于小鼠组织的小鼠抗体 | 一抗孵育前用 MouseOnMouse 封闭试剂处理组织 |
切片变干 | 避免切片变干 |